正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备:
①组织样本:称取约0.1g组织(水分充足的样本可取0.5g),加入1mL 提取液,进行冰浴匀浆,在4℃ 12000g离心10min,取上清,置冰上待测。
【注】若增加样本量,可以按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。
②细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
③液体样本:直接检测,若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
①酶标仪预热30min以上,调节波长至510nm。
②试剂二先按照试剂配制要求配好,再进行一下操作。
③先检测
空白管(仅做一次):40μL试剂一+10μL试剂二+450μL试剂三,立即混匀后取10μL,立即按照第⑥步显色反应依次加样检测,吸光值即为A空白。
④建议:由于反应时长是5min,若一次性待检样本较多,可以分批检测样本。
⑤在EP管中依次加入:
| 试剂名称(μL) | 测定管 |
| 样本 | 10 |
| 试剂一 | 30 |
| 试剂二 | 10 |
| 混匀,室温25℃准确反应5min。(观察有气泡产生,酶活性越大,则气泡越多。) |
| 试剂三 | 450ul |
| 混匀后,立即取10μL混合液进行第⑥步测试。(若浑浊,则需8000g 4℃离心10min,取上清液。) |
⑥显色反应:
可根据使用量将试剂一、试剂四、试剂五按170μL:10μL:10μL的比例事先混合。
| 试剂名称(μL) | 测定管 |
| 混合液 | 10 |
| 试剂一 | 170 |
| 试剂四 | 10 |
| 试剂五 | 10 |
| 混匀,室温25℃反应1min,510nm处测定吸光值A,ΔA=A空白-A测定。 |
【注】:应用本试剂盒,当ΔA过大或过小时,建议将样本进行稀释或增加样本量进行测试。