正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备
① 组织样本:
称取约0.1g组织(水分充足的样本可取0.5g),加入1mL提取液,进行冰浴匀浆,在4℃、12000g条件下离心10min,取上清,置冰上待测。
【注】若增加样本量,可以按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。
② 细菌/细胞样本:
先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例进行提取,建议500万细菌或细胞加入1mL提取液。
超声波破碎细菌或细胞,超声条件为:冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次。随后在4℃、12000g条件下离心10min,取上清,置冰上待测。
③ 液体样本:
直接检测;若样本浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
① 酶标仪预热30min以上,调节波长至510nm。
② 试剂二先按照试剂配制要求配制好,再进行以下操作。
③ 空白管检测(仅做一次):
依次加入40μL试剂一、10μL试剂二和450μL试剂三,立即混匀后取10μL,立即按照第⑥步显色反应依次加样检测,测得的吸光值即为A
空白。
④ 由于反应时长为5min,若一次性待检样本较多,建议分批检测。
⑤ 在EP管中依次加入以下试剂:
| 试剂名称(μL) |
测定管 |
| 样本 |
10 |
| 试剂一 |
30 |
| 试剂二 |
10 |
混匀,室温25℃准确反应5min。观察是否有气泡产生,酶活性越大,产生的气泡越多。
混匀后,立即取10μL混合液进行第⑥步测试。若混合液浑浊,则需在4℃、8000g条件下离心10min,取上清液进行检测。
⑥ 显色反应:
可根据使用量,将试剂一、试剂四和试剂五按照170μL:10μL:10μL的比例预先混合。
| 试剂名称(μL) |
测定管 |
| 混合液 |
10 |
| 试剂一 |
170 |
| 试剂四 |
10 |
| 试剂五 |
10 |
混匀,室温25℃反应1min,于510nm处测定吸光值A,计算公式如下:
ΔA=A空白-A测定
【注】使用本试剂盒时,当ΔA过大或过小时,建议将样本进行稀释或增加样本量后重新测试。