正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备:
①组织样本:称取约0.1g组织(水分充足的样本可取0.5g),加入1mL 提取液,进行冰浴匀浆,在4℃ 12000g离心10min,取上清,置冰上待测。
【注】若增加样本量,可以按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。
②细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
③液体样本:直接检测,若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
①酶标仪预热30min以上,调节波长至450nm。
②测试前将试剂一、三和四25℃水浴5min以上。
③用排枪操作,以减少各孔间因加入试剂时间先后导致的误差。
④在96孔板中依次加入:
| 试剂名称(μL) | 样本管 | 样本对照管(可选做) | 空白管1 (仅做一次) | 空白管2 (仅做一次) |
| 试剂一 | 150 | 150 | 150 | 150 |
| 试剂二 | 10 | | 10 | |
| 蒸馏水 | | 10 | 20 | 30 |
| 样本 | 20 | 20 | | |
| 试剂三 | 10 | 10 | 10 | 10 |
| 试剂四 | 10 | 10 | 10 | 10 |
| 充分混匀,室温(25℃)避光静置30min(准确时间)后,在450nm处测定各管吸光值A |
【
注】:
1、若样本数量较多,测定前可将试剂一、三和四按照150μL:10μL:10μL比例混成一个混合液(需依据每次检测的样本数量来混合对应的试剂量),每孔务必最后一步加170μL该混合液。
2、样本对照管:提取后样本颜色较深:如棕褐色或黄色,或A对照管值>0.1,可做此管,否则抑制率偏低,即SOD活性偏低。若为相同样本可做一组样本对照管,若每个样本都做对照管,则该试剂盒由原来可测96样变为48样。
3、若样本管数值较低,可能是:①试剂四没有现配现用;②没有按顺序加试剂;③反应温度需室温(25℃)。