正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备:
①组织样本:
称取约0.1g组织(水分充足的样本可取0.5g),加入1mL提取液,进行冰浴匀浆,在4℃、12000g条件下离心10min,取上清待测。
【注】若增加样本量,可以按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。
②细菌/细胞样本:
先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例进行提取(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液)。超声波破碎细菌或细胞,超声条件为:冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次;随后在4℃、12000g条件下离心10min,取上清待测。
③液体样本:
直接检测;若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
①酶标仪预热30min以上,设置温度为25℃,调节波长至412nm。
②所有试剂使用前解冻至室温,或置于25℃水浴锅中温育10min。
③试剂一、提取液和试剂三可按照10:150:10的比例配制成混合液。该混合液需现配现用,按实际用量配制,每孔一次性加入170μL混合液。加样顺序建议为:先加入样本,再单独加入试剂二,最后加入现配现用的混合液。
④在96孔板中依次加入:
| 试剂名称(μL) |
测定管 |
| 试剂一 |
10 |
| 提取液 |
150 |
| 样本 |
20 |
| 试剂二 |
10 |
| 试剂三 |
10 |
立即混匀,在412nm波长下于30s时读取吸光值A
1;随后在室温(25℃)条件下孵育10min,再读取吸光值A
2。
ΔA=A2-A1