正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备:
①组织样本:称取约0.1g组织(水分充足的样本可取0.5g),加入1mL 提取液,进行冰浴匀浆,在4℃ 12000g离心10min,取上清待测。
【注】若增加样本量,可以按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。
②细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000g 4℃离心10min,取上清待测。
③液体样本:直接检测,若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
①酶标仪预热30min以上,设置温度在25℃,调节波长至412nm。
②所有试剂在使用前解冻至室温或25℃水浴锅温育10min。
③试剂一和提取液和试剂三可按照10:150:10比例配成混合液(该混合液配多少用多少,现配现用,一枪加170μL该混合液);可先加样本,再加试剂二(该试剂务必单独加),最后加现配现用的混合液。
④在96孔板中依次加入:
| 试剂名称(μL) | 测定管 |
| 试剂一 | 10 |
| 提取液 | 150 |
| 样本 | 20 |
| 试剂二 | 10 |
| 试剂三 | 10 |
| 立即混匀,在412nm波长下30秒时读取A1,室温(25℃)条件下孵育10min后再读取A2;ΔA=A2-A1。 |