正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备
①组织样本:称取约0.1g组织(水分充足的样本可取0.5g),加入1mL 提取液,进行冰浴匀浆,在4℃ 12000g离心10min,取上清待测。
【注】若增加样本量,可以按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取;
提取液尽快测定,请勿将样品长时间低温保存,以免影响测定结果。
②细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000g 4℃离心10min,取上清待测。
③液体样本:直接检测。若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
①酶标仪预热30min以上,调节波长至540nm。
②在EP管中依次加入:
| 试剂名称(μL) | 测定管 | 空白管(仅做一次) |
| 样本 | 100 | |
| 提取液 | | 100 |
| 试剂一 | 100 | 100 |
| 混匀,37℃反应10min |
| 反应mix | 200 | 200 |
| 混匀, 37℃反应5min(准确时间)后,立即取出200μL至96孔板中(若浑浊可于8000g室温下离心5min后取200μL上清液),在540nm处测吸光值,ΔA=A测定管-A空白管 |