正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备:
①组织样本:称取约0.1g组织(水分充足的样本取0.5g或更多),加入1mL 提取液,进行冰浴匀浆,在4℃ 12000g离心10min,取上清待测。
【注】若增加样本量,可以按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。
②细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000g 4℃离心10min,取上清待测。
③液体样本:直接检测。若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
①酶标仪预热30min以上,调节波长至534nm。
②叶片类样本直接检测即可,果肉类样本一般需先稀释10倍再检测(可按照加样表加入20μL样本,试剂一增加为280μL)。
③在EP管中依次加入:
| 试剂名称(μL) | 测定管 | 标准管 (仅做一次) | 空白管 (仅做一次) |
| 样本 | 200 | | |
| 标准液 | | 200 | |
| 提取液 | | | 200 |
| 试剂一 | 100 | 100 | 100 |
| 无水乙醇 | 100 | 100 | 100 |
| 试剂二(稀释后) | 50 | 50 | 50 |
| 试剂三 | 100 | 100 | 100 |
| 试剂四 | 50 | 50 | 50 |
| 混匀,于30℃反应60min后,于8000g室温离心5min后,立即取出200μL澄清液体至96孔板中,立即于534nm处读取各管吸光值A。 |