正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备:
①组织样本:称取约0.1g组织(水分充足的样本取0.5g或更多),加入1mL 提取液,进行冰浴匀浆,在4℃ 12000g离心10min,取上清待测。
【注】若样本颜色较深(如植物叶片),可引起起始值A1值较大如超过2,可在样本制备过程中增加除色素步骤:取约0.2g组织(水分充足样本可取1g),加入1mL 90%乙醇冰浴匀浆,12000g 4℃离心10min,弃掉色素较深的上清液;以上除色素步骤重复2次。最后向离心得到的沉淀中加入1mL提取液,混匀或再次冰浴匀浆,12000g 4℃离心10min,取上清置冰上待测。
②细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000g 4℃离心10min,取上清待测。
③液体样本:直接检测。若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
①酶标仪预热30min以上,调节波长至290nm,设置震荡时间5s。
②试剂一放25℃水浴中预热30min(如果实验室温度达到25℃以上,可以室温静置30min)。
③试剂一和二可按照150:20比例配成混合液(一枪加170μL该混合液,该混合液用多少配多少,现配现用),试剂三需单独加。
③在96孔板中依次加入:
| 试剂名称(μL) | 测定管 |
| 样本 | 20 |
| 试剂一 | 150 |
| 试剂二 | 20 |
| 试剂三 | 10 |
| 混匀,在25℃条件下,在290nm处,分别于30s和5min30s读取吸光值A,相应记为A1和A2,ΔA=A1-A2 |