正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备:
①组织样本:称取约0.1g组织(水分充足样本可取0.5g),加入1mL 提取液,进行冰浴匀浆,在4℃ 12000g离心10min,取上清,置冰上待测。
【注】若增加样本量,可按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5-10的比例进行提取。
②细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
③液体样本:直接检测。若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
①酶标仪预热30min以上,调节波长至450nm。
②所有试剂解冻至室温(25℃)或于水浴锅(25℃)中孵育15-30min。
③试剂一、二、三、四可按照150:10:10:10比例配成混合液(一枪加180μL该混合液,该混合液用多少配多少,现配现用)。
④在96孔板中依次加入:
| 试剂名称(μL) | 测定管 | 标准品管 |
| 样本 | 20 | |
| 标准品 | | 20 |
| 试剂一 | 150 | 150 |
| 试剂二 | 10 | 10 |
| 试剂三 | 10 | 10 |
| 试剂四 | 10 | 10 |
| 混匀,立即于450nm处读取各管吸光值A1,37℃孵育15min后读取A2,ΔA=A2-A1。 |
【注】:本操作流程适用于绝大多数常规样本检测,实验条件可根据实际样本状态适度微调;针对特殊类型样本,可联系我司提供优化建议。