正式实验前务必选取2-3个预期差异较大的样本做测定,了解本批样本情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、样本制备:
①组织样本:称取约0.1g组织(水分充足的样本可取0.5g),加入1mL 提取液,进行冰浴匀浆,在4℃ 12000g离心10min,取上清待测。
【注】若增加样本量,可以按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。
②细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10
4个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000g 4℃离心10min,取上清待测。
③液体样本:直接检测,若浑浊,离心后取上清检测。
2、上机检测
①酶标仪预热30min以上,调节波长至412nm。
②所有试剂在使用前解冻至室温或25℃水浴锅温育10min。
③用排枪操作,以减小各孔间因加入试剂时间先后导致的误差。
④在96孔板中依次加入:
| 试剂名称(μL) | 测定管 | 空白管 | 空白管 |
| 试剂一 | 160 | 170 | 170 |
| 试剂二 | 10 | 10 | 10 |
| 样本 | 10 | | |
| 试剂三 | 10 | 10 | 10 |
| 25℃条件下反应10min。 |
| 试剂四 | 10 | 10 | 10 |
| 立即混匀,25℃条件下孵育2min,在412nm波长读取吸光度A,ΔA=A空白管-A测定管。 |
【注】:第一步反应时,孵育10min即可,如测定管与空白管测值非常接近,说明酶活性较低,可以适当增加孵育时间至30min或增加样本量(试剂一的加入量相应减少)。